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巨噬细胞培养2 W8 n* T6 q: e- H m( L4 }- ?
1.实验前三天,向每只小鼠腹腔内注入无菌硫羟乙酸肉汤1ml(勿注入肠内)。
8 I5 m6 e, ~ V! e' e2.引颈杀死动物,手提鼠尾将全鼠浸入70%酒精中3~5秒。- U* V) z" l8 d3 o! J3 o/ H& R
3.置动物于解剖台上,用针头固定四肢,双手持镊撕开皮肤拉向两侧,暴露出腹膜,但勿伤及腹膜壁。$ M n8 y8 N/ v; p
4.再用70%酒精擦洗腹膜壁后,用注射器吸10ml Eagle液注入腹腔中,同时从两侧用手指揉压腹膜壁,令液体在腹腔内充分流动。. { B, S3 ~; e' s9 r- V
5.用针头轻轻挑起腹壁,使动物体微倾向一侧,使腹腔中液体集于针头下吸取入针管内。$ Y1 G6 E' @6 o, F% K
6.小心拔出针头,把液体注入离心管中,250g 4℃离心10分钟,去上清,加10 ml Eagle培养基。$ c- A$ e$ B0 F& R( c& F
7.计数细胞,每只小鼠可产生20~30×105细胞,其中90%为巨噬细胞。6 b8 m) b- ?2 n3 ?6 X3 s
8.为获取3×105个帖附细胞/平方厘米,需接种2.5×106/ml。. D4 o6 `0 B2 R# W x6 k2 M$ _
9.为纯化培养细胞,去除其它白细胞,接种数小时后,去除培养液,用Eagle液冲洗1~2次后,再加新Eagle培养液置37℃ CO2温箱中培养。 ! ^. m6 k4 C2 M: h6 L
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6 Y' o: d4 j' `7 f( }肌组织细胞培养 5 y) v* F! J: U5 H5 P" }
- l8 {0 k O3 v1 H+ o% |" y骨骼肌细胞培养
. X( D5 t& \, t7 f+ R1.杀死动物,无菌取大腿肌组织,切成0.3~0.5厘米小块。; F2 O* x ^2 B) m
2.用不含钙镁离子的Hanks液配的0.25%胰蛋白酶消化,无菌纱网或纱布滤过,合成培养基加10%小牛血清培养,为促进分化可加1%的胎汁。
/ D5 @' e) \ _' O3.细胞接种量为2×106/皿,接种在胶原或明胶的底物上能促进细胞分化。明胶制备比较简单,常用Hanks液配的0.01%明胶。 # B( o5 s, x0 v
肌细胞培养
, F/ ?# ^3 }& F7 G* ~+ ]1.选新鲜受精鸡卵,置温箱中孵育(温箱中放有水槽,以维持箱内温度),每日翻动一次(180度),孵育9~12天。
+ H t: p- ?& c2.取鸡胎法相间《组织培养和分子细胞学技术》53页。
9 f6 L( H3 W, K3 f; ]3.用眼科剪剪开胸腔,剥出心脏,置入皿中用Hanks液漂洗1~2次。 R. v" q& ]0 r
4.小心剪除大的动静脉,保留心室肌,用组织块或消化培养法均可。
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神经组织细胞培养* c1 a! h) \5 v+ Y( I% l- U
`' U; E3 r6 V) F1.获取脑组织后,先仔细剥除脑膜和血管等纤维成分,置入Hanks液中漂洗1~2次后,置于30~50倍的Hanks液中,脑组织比较柔软,反复吹打即可制成细胞悬液。" [9 k2 r* L- E
2.为排除脂肪成分和其它碎块,把悬液注入离心管中,在室温直立5~10分钟后,细胞或细胞团块自然下沉,脂肪等杂物易漂浮于悬液表层,吸除上清,如此反复二三次可获得较多的细胞成分。# K- N& ^7 s% A2 x3 a
3.向末次沉淀物中加入适量营养液,通过纱网或纱布滤过,计数细胞并调整好细胞密度,接种入培养瓶或皿中,置5%CO2温箱中培养。
* Y2 t2 A& J$ x) x0 s/ X+ t4.细胞生长汇合后,可用0.25%胰蛋白酶消化法做传代处理,加消化液的量以能覆盖细胞层即可,待细胞开始从瓶壁脱离(平均5~10分钟),加入含有血清培养液,吹打制成细胞悬液。
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6 b o. f$ v0 Z3 z, R神经胶质细胞培养
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" c7 X5 y2 G/ Y6 F r) E) M- K4 H* W神经细胞(神经元)不易培养,只有在适宜情况下,如接种在胶原底层上,或加入神经生长因子和胶质细胞因子时,可出现一定程度的分化,长出突起等现象,但很难使之增值。而神经胶质细胞是神经组织中比较容易培养的成分。
- `2 M# x$ l$ i 人、鼠等脑组织即可用于神经胶质细胞培养,不仅能获得生长的胶质细胞,也可形成能传代的二倍体细胞系。一般说来,胶质细胞在培养中生长不稳定,不易自发转化,但对外界因素仍保持很好的敏感性,可用ROUS病毒和SV4等诱发转化。
+ X* h2 G1 P/ |3 `养方法如下:: i9 y3 b% j% l, U, S3 W y
1、从手术室无菌取脑髓灰质或白质后,仔细剥除脑膜、血管和纤维成分,置Hanks液中漂洗一、二次。
8 _8 Z# S; {8 A( H# `- A- W2、置于30—50倍体积的Hanks液中,此时脑组织比较柔软,反复吹打即制成细胞悬液。
& r. n: F$ O2 B+ u+ T3 G! w3、把悬液注入离心管室温中直立5—10分钟后,细胞或细胞团快自然下沉,脂肪等杂物易漂浮,可吸除上层、反复二、三次,即可排除脂肪成分和其它碎块并获较多细胞成分。! {, W3 {6 w+ h) d# W
4、在沉降物中加入适量培养液,通过纱网成纱布过滤,计数并调整细胞密度。
. H S7 w0 |) C$ o5 U0 \7 F5、接入培养瓶或皿中,置5%CO2温箱中培养。
" b, P& m( Z q3 n o3 X# r该细胞适应环境过程较长,接种后贴壁较慢。贴壁后短期内也可能不见细胞分裂现象,然而一旦生长后即能迅速进入旺盛的增殖状态。细胞传代可以0.25%胰酶消化处理。' T' w! Q3 X, r* v, C- A' c
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内皮细胞培养1 e1 ?$ X. }3 z
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内皮细胞易于从大血管分离培养成单层细胞,对于研究内皮细胞再生、肿瘤促血管生长因子(TAF)等有很大价值。) E( K6 l$ j4 a
研究人内皮细胞培养以人脐带静脉灌流消化法最为简便,其法如下:
) F; N3 Q& _( _" g) U1、产后新鲜脐带,无菌剪取10—15厘米长一段,如不能立即培养,可于12小时内保存于4℃。
( w" S/ |' F; r/ f; ]+ R- j" @2、用三通注射器吸取温PBS液注入脐静脉中洗去残血,在入口处用线绳扎紧,以防液体返流。# L+ c7 r A5 ^$ U
3、用血管钳夹紧脐带一端,从另一端向脐静脉中徐徐注入终浓度为0.1%的粗制胶原酶,充满血管,消化3—10分钟;注入口用线绳扎,以防液体返流。
2 E W' z6 M. }" R" U4、吸出含有内皮细胞的消化液,于离心管中,注入温PBS轻轻反复冲洗后,一并注入离心管中(此步骤可重复)。5、离心去上清,加入RPMI1640培养液制成细胞悬液,接种入培养器皿中,置温箱培养。两至三天可见细胞长成单层。
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8 V4 D- P ?& U/ L0 l上皮细胞培养9 H* ^/ `0 K; q2 R; |- d, \, C
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上皮细胞包括腺上皮是很多器官如肝、胰、乳腺等的功能成分,又由于癌起源于上皮组织,故上皮细胞培养特别受到重视。但上皮细胞培养中常混杂有成纤维细胞,培养时生长速度往往超过上皮细胞,并难以纯化,同时上皮细胞难以在体外长期生存,因此纯化和延长生存时间是培养关键。* ^/ o+ w( k+ r/ ^. ^9 T
体内上皮细胞生长在胶原构成的基膜,因此培养在有胶原的底物上可能利于生长,另外人或小鼠表皮细胞培养在以3T3细胞为饲养层(用射线照射后)时,细胞易生长并可发生一定程度的分化现象。降低PH、Ca2+含量和温度,向培养基中加入表皮生长因子,均有利于表皮细胞生长。( e6 Q8 x5 y# j( r
以表皮细胞为例,用皮肤表皮和真皮分离培养法可获得纯上皮细胞,其法如下(黑木凳志夫 1981)
$ G& l* Z0 Z' O3 L, L' \1 ?6 x 1、取材:外科植皮或手术残余皮肤小块,早产流产儿皮肤更好,取角化层薄者,切成0.5-1平方厘米小块。' i2 w# J8 s' q- u
2、置0.02%EDTA中,室温,5分钟。: G9 m' f3 F8 A* i0 o) H- C6 S7 l
3、换入0.25%胰蛋白酶中,4℃过夜。
0 b& ?4 C% |5 n% p$ m# E 4、分离:取出皮块,用血管钳或镊子将表皮与真皮层分开。
, k( b% t8 S& y 5、取出表皮,剪成更小的块后,置0.25%胰酶中,37℃,30—60分钟。
4 T0 c! x: `' P, ~1 N7 n7 ` 6、反复吹打,制成悬液。6 c0 S1 v( @: z2 O& K3 ^+ H; n
7、培养:用80目不锈钢纱网滤过后,低速离心,吸去上清。9 z3 X$ h5 M& [
8、直接加入培养基(Eagle加20%小牛血清)制成细胞悬液,接种入培养瓶,CO2温箱培养。 |
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