各类细胞培养

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巨噬细胞培养
1．实验前三天，向每只小鼠腹腔内注入无菌硫羟乙酸肉汤1ml（勿注入肠内）。
2．引颈杀死动物，手提鼠尾将全鼠浸入70％酒精中3～5秒。
3．置动物于解剖台上，用针头固定四肢，双手持镊撕开皮肤拉向两侧，暴露出腹膜，但勿伤及腹膜壁。
( E* U2 }7 q1 L$ z- ]( G4．再用70％酒精擦洗腹膜壁后，用注射器吸10ml Eagle液注入腹腔中，同时从两侧用手指揉压腹膜壁，令液体在腹腔内充分流动。
5．用针头轻轻挑起腹壁，使动物体微倾向一侧，使腹腔中液体集于针头下吸取入针管内。
6．小心拔出针头，把液体注入离心管中，250g 4℃离心10分钟，去上清，加10 ml Eagle培养基。
7．计数细胞，每只小鼠可产生20～30×105细胞，其中90％为巨噬细胞。
8．为获取3×105个帖附细胞/平方厘米，需接种2.5×106/ml。
9．为纯化培养细胞，去除其它白细胞，接种数小时后，去除培养液，用Eagle液冲洗1～2次后，再加新Eagle培养液置37℃ CO2温箱中培养。
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! ^% x& `/ R( F" K' u肌组织细胞培养
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骨骼肌细胞培养
1．杀死动物，无菌取大腿肌组织，切成0.3～0.5厘米小块。
2．用不含钙镁离子的Hanks液配的0.25％胰蛋白酶消化，无菌纱网或纱布滤过，合成培养基加10％小牛血清培养，为促进分化可加1％的胎汁。
( d; d( l, e8 I( a1 Q3．细胞接种量为2×106/皿，接种在胶原或明胶的底物上能促进细胞分化。明胶制备比较简单，常用Hanks液配的0.01％明胶。  
" Q" Q; p& t$ ?; Q( y肌细胞培养
& h: L+ N0 S2 u+ I3 p2 K1．选新鲜受精鸡卵，置温箱中孵育（温箱中放有水槽，以维持箱内温度），每日翻动一次（180度），孵育9～12天。
2．取鸡胎法相间《组织培养和分子细胞学技术》53页。
, Q" T' N  q- a4 r- U) b( `+ X3．用眼科剪剪开胸腔，剥出心脏，置入皿中用Hanks液漂洗1～2次。
4．小心剪除大的动静脉，保留心室肌，用组织块或消化培养法均可。


  O% l/ [2 C) ^神经组织细胞培养
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! J+ G6 X8 q/ }/ ^; z; T4 k1．获取脑组织后，先仔细剥除脑膜和血管等纤维成分，置入Hanks液中漂洗1～2次后，置于30～50倍的Hanks液中，脑组织比较柔软，反复吹打即可制成细胞悬液。
5 Y1 g$ C) y  c! Z. ?  q) J2．为排除脂肪成分和其它碎块，把悬液注入离心管中，在室温直立5～10分钟后，细胞或细胞团块自然下沉，脂肪等杂物易漂浮于悬液表层，吸除上清，如此反复二三次可获得较多的细胞成分。
, Q4 F  `& [# `9 J& g! d3．向末次沉淀物中加入适量营养液，通过纱网或纱布滤过，计数细胞并调整好细胞密度，接种入培养瓶或皿中，置5％CO2温箱中培养。
4．细胞生长汇合后，可用0.25％胰蛋白酶消化法做传代处理，加消化液的量以能覆盖细胞层即可，待细胞开始从瓶壁脱离（平均5～10分钟），加入含有血清培养液，吹打制成细胞悬液。
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  |1 f5 Y1 ~9 v: m神经胶质细胞培养


) l# T; n8 {/ N$ m2 V神经细胞（神经元）不易培养，只有在适宜情况下，如接种在胶原底层上，或加入神经生长因子和胶质细胞因子时，可出现一定程度的分化，长出突起等现象，但很难使之增值。而神经胶质细胞是神经组织中比较容易培养的成分。
5 f7 X, p% c. L( w7 n0 D  人、鼠等脑组织即可用于神经胶质细胞培养，不仅能获得生长的胶质细胞，也可形成能传代的二倍体细胞系。一般说来，胶质细胞在培养中生长不稳定，不易自发转化，但对外界因素仍保持很好的敏感性，可用ROUS病毒和SV4等诱发转化。
' a* D8 x2 h: x  n0 l9 r8 i养方法如下：
1、从手术室无菌取脑髓灰质或白质后，仔细剥除脑膜、血管和纤维成分，置Hanks液中漂洗一、二次。
2、置于30—50倍体积的Hanks液中，此时脑组织比较柔软，反复吹打即制成细胞悬液。
2 X+ K/ x# F3 X& i6 l3、把悬液注入离心管室温中直立5—10分钟后，细胞或细胞团快自然下沉，脂肪等杂物易漂浮，可吸除上层、反复二、三次，即可排除脂肪成分和其它碎块并获较多细胞成分。
/ A" ^# G+ m; c: V$ H% t4、在沉降物中加入适量培养液，通过纱网成纱布过滤，计数并调整细胞密度。
5、接入培养瓶或皿中，置5%CO2温箱中培养。
8 j% b) r6 M+ o! U# M该细胞适应环境过程较长，接种后贴壁较慢。贴壁后短期内也可能不见细胞分裂现象，然而一旦生长后即能迅速进入旺盛的增殖状态。细胞传代可以0.25%胰酶消化处理。

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2 C$ z/ C7 q6 M: I* W+ A内皮细胞培养


' M6 P/ D( ]  y& B, i8 p  r4 T内皮细胞易于从大血管分离培养成单层细胞，对于研究内皮细胞再生、肿瘤促血管生长因子（TAF）等有很大价值。
. {3 F. H  z+ Z  X- V  研究人内皮细胞培养以人脐带静脉灌流消化法最为简便，其法如下：
1、产后新鲜脐带，无菌剪取10—15厘米长一段，如不能立即培养，可于12小时内保存于4℃。
2、用三通注射器吸取温PBS液注入脐静脉中洗去残血，在入口处用线绳扎紧，以防液体返流。
3、用血管钳夹紧脐带一端，从另一端向脐静脉中徐徐注入终浓度为0.1%的粗制胶原酶，充满血管，消化3—10分钟；注入口用线绳扎，以防液体返流。
" i& V: Y0 K' e4 [# F- H- ]1 a( I4、吸出含有内皮细胞的消化液，于离心管中，注入温PBS轻轻反复冲洗后，一并注入离心管中（此步骤可重复）。5、离心去上清，加入RPMI1640培养液制成细胞悬液，接种入培养器皿中，置温箱培养。两至三天可见细胞长成单层。


上皮细胞培养
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上皮细胞包括腺上皮是很多器官如肝、胰、乳腺等的功能成分，又由于癌起源于上皮组织，故上皮细胞培养特别受到重视。但上皮细胞培养中常混杂有成纤维细胞，培养时生长速度往往超过上皮细胞，并难以纯化，同时上皮细胞难以在体外长期生存，因此纯化和延长生存时间是培养关键。
& r) O- s1 y+ b  A  c5 v    体内上皮细胞生长在胶原构成的基膜，因此培养在有胶原的底物上可能利于生长，另外人或小鼠表皮细胞培养在以3T3细胞为饲养层（用射线照射后）时，细胞易生长并可发生一定程度的分化现象。降低PH、Ca2+含量和温度，向培养基中加入表皮生长因子，均有利于表皮细胞生长。
    以表皮细胞为例，用皮肤表皮和真皮分离培养法可获得纯上皮细胞，其法如下（黑木凳志夫  1981）
    1、取材：外科植皮或手术残余皮肤小块，早产流产儿皮肤更好，取角化层薄者，切成0.5－1平方厘米小块。
    2、置0.02%EDTA中，室温，5分钟。
    3、换入0.25%胰蛋白酶中，4℃过夜。
$ I; _6 ]: _; }* l2 R( m" z    4、分离：取出皮块，用血管钳或镊子将表皮与真皮层分开。
! |2 x0 {* g! i    5、取出表皮，剪成更小的块后，置0.25%胰酶中，37℃，30—60分钟。
    6、反复吹打，制成悬液。
+ u9 z1 u5 }/ d; f9 d8 b& ?4 r    7、培养：用80目不锈钢纱网滤过后，低速离心，吸去上清。
    8、直接加入培养基（Eagle加20%小牛血清）制成细胞悬液，接种入培养瓶，CO2温箱培养。

yuanfengtcm

谢谢哦。
和我做的有些出入。
. p+ p; G  ]9 c+ ?1 z0 ~  N在努力啦。

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zhaokan

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浪漫小床

多谢了，有可能我实验就要用到啊