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巨噬细胞培养' z- {% s( M( U
1.实验前三天,向每只小鼠腹腔内注入无菌硫羟乙酸肉汤1ml(勿注入肠内)。
) p6 Z" E. Q4 m F% I2.引颈杀死动物,手提鼠尾将全鼠浸入70%酒精中3~5秒。
% q- e9 \1 L, E3.置动物于解剖台上,用针头固定四肢,双手持镊撕开皮肤拉向两侧,暴露出腹膜,但勿伤及腹膜壁。
7 i. P% c' f: J, H; B2 J5 N( D4.再用70%酒精擦洗腹膜壁后,用注射器吸10ml Eagle液注入腹腔中,同时从两侧用手指揉压腹膜壁,令液体在腹腔内充分流动。
* E4 S( |5 ^9 ]( A' q2 D5.用针头轻轻挑起腹壁,使动物体微倾向一侧,使腹腔中液体集于针头下吸取入针管内。2 d1 z* O6 j5 ^* y7 w
6.小心拔出针头,把液体注入离心管中,250g 4℃离心10分钟,去上清,加10 ml Eagle培养基。6 w7 @7 O( h e- ^# b* ^
7.计数细胞,每只小鼠可产生20~30×105细胞,其中90%为巨噬细胞。
6 e/ n' p$ v4 G8.为获取3×105个帖附细胞/平方厘米,需接种2.5×106/ml。
! Q' f$ f% I7 E; Z& A& {# u% {9.为纯化培养细胞,去除其它白细胞,接种数小时后,去除培养液,用Eagle液冲洗1~2次后,再加新Eagle培养液置37℃ CO2温箱中培养。 ! g- Y3 k+ r* \) [( n$ U
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肌组织细胞培养 * J/ s. B+ V. S8 H
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骨骼肌细胞培养
& P! R% e( E. q. F t+ U y1.杀死动物,无菌取大腿肌组织,切成0.3~0.5厘米小块。
( N- @( |' S2 t( g' ^+ z2.用不含钙镁离子的Hanks液配的0.25%胰蛋白酶消化,无菌纱网或纱布滤过,合成培养基加10%小牛血清培养,为促进分化可加1%的胎汁。9 E# f. z; }5 a. P
3.细胞接种量为2×106/皿,接种在胶原或明胶的底物上能促进细胞分化。明胶制备比较简单,常用Hanks液配的0.01%明胶。 " I. ]: M: s8 s" p) E
肌细胞培养% X/ ~5 j) G% x
1.选新鲜受精鸡卵,置温箱中孵育(温箱中放有水槽,以维持箱内温度),每日翻动一次(180度),孵育9~12天。# W9 ^- J" _$ f( a5 Y8 ^
2.取鸡胎法相间《组织培养和分子细胞学技术》53页。, o; @0 W" n1 F2 i" t8 }
3.用眼科剪剪开胸腔,剥出心脏,置入皿中用Hanks液漂洗1~2次。
* P1 T, @" v. {! y3 L& z4.小心剪除大的动静脉,保留心室肌,用组织块或消化培养法均可。
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; ]" i8 H: W ]6 {( W神经组织细胞培养
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1.获取脑组织后,先仔细剥除脑膜和血管等纤维成分,置入Hanks液中漂洗1~2次后,置于30~50倍的Hanks液中,脑组织比较柔软,反复吹打即可制成细胞悬液。/ m) h1 x/ r& [2 a0 i
2.为排除脂肪成分和其它碎块,把悬液注入离心管中,在室温直立5~10分钟后,细胞或细胞团块自然下沉,脂肪等杂物易漂浮于悬液表层,吸除上清,如此反复二三次可获得较多的细胞成分。; Q0 ]. x- ^& W/ Q! q& X2 }& U
3.向末次沉淀物中加入适量营养液,通过纱网或纱布滤过,计数细胞并调整好细胞密度,接种入培养瓶或皿中,置5%CO2温箱中培养。8 k, n3 h: W2 L0 H4 o1 \0 U$ Z
4.细胞生长汇合后,可用0.25%胰蛋白酶消化法做传代处理,加消化液的量以能覆盖细胞层即可,待细胞开始从瓶壁脱离(平均5~10分钟),加入含有血清培养液,吹打制成细胞悬液。
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神经胶质细胞培养
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神经细胞(神经元)不易培养,只有在适宜情况下,如接种在胶原底层上,或加入神经生长因子和胶质细胞因子时,可出现一定程度的分化,长出突起等现象,但很难使之增值。而神经胶质细胞是神经组织中比较容易培养的成分。
5 Y5 P8 f! f7 y) g# ^. P9 K 人、鼠等脑组织即可用于神经胶质细胞培养,不仅能获得生长的胶质细胞,也可形成能传代的二倍体细胞系。一般说来,胶质细胞在培养中生长不稳定,不易自发转化,但对外界因素仍保持很好的敏感性,可用ROUS病毒和SV4等诱发转化。
+ t9 K7 t7 Z8 A$ f% b养方法如下:
6 E0 C7 \! p9 r0 T1、从手术室无菌取脑髓灰质或白质后,仔细剥除脑膜、血管和纤维成分,置Hanks液中漂洗一、二次。
8 ?, x0 |2 L' |* k1 u- Y2、置于30—50倍体积的Hanks液中,此时脑组织比较柔软,反复吹打即制成细胞悬液。
/ y8 A- q: r" J% `6 t* R4 o- a3、把悬液注入离心管室温中直立5—10分钟后,细胞或细胞团快自然下沉,脂肪等杂物易漂浮,可吸除上层、反复二、三次,即可排除脂肪成分和其它碎块并获较多细胞成分。
8 C/ P9 h+ e# ^" Y. W4、在沉降物中加入适量培养液,通过纱网成纱布过滤,计数并调整细胞密度。 - @! R8 Y# l" ]3 N. m. [( [: @& p2 _
5、接入培养瓶或皿中,置5%CO2温箱中培养。& h' O2 z* s# _# c) ]7 E. ]
该细胞适应环境过程较长,接种后贴壁较慢。贴壁后短期内也可能不见细胞分裂现象,然而一旦生长后即能迅速进入旺盛的增殖状态。细胞传代可以0.25%胰酶消化处理。' ^9 g P) H( r6 I( E, v
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内皮细胞培养( r0 ~7 v/ Y4 Q: f5 b% C E6 n
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4 O; x* P9 T5 F$ L5 V7 ^内皮细胞易于从大血管分离培养成单层细胞,对于研究内皮细胞再生、肿瘤促血管生长因子(TAF)等有很大价值。
: h" C+ D7 g9 A 研究人内皮细胞培养以人脐带静脉灌流消化法最为简便,其法如下:8 k- {& @) u6 C4 W1 m
1、产后新鲜脐带,无菌剪取10—15厘米长一段,如不能立即培养,可于12小时内保存于4℃。
) `$ \3 y# [3 E* w% U" V9 s% S2、用三通注射器吸取温PBS液注入脐静脉中洗去残血,在入口处用线绳扎紧,以防液体返流。
9 e8 a _ X$ k) p6 L. n& t G3、用血管钳夹紧脐带一端,从另一端向脐静脉中徐徐注入终浓度为0.1%的粗制胶原酶,充满血管,消化3—10分钟;注入口用线绳扎,以防液体返流。
% o2 \. p/ | r: k; E( s4、吸出含有内皮细胞的消化液,于离心管中,注入温PBS轻轻反复冲洗后,一并注入离心管中(此步骤可重复)。5、离心去上清,加入RPMI1640培养液制成细胞悬液,接种入培养器皿中,置温箱培养。两至三天可见细胞长成单层。6 g2 H/ K- V# X! I6 l& i: ]( k1 z
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上皮细胞培养
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上皮细胞包括腺上皮是很多器官如肝、胰、乳腺等的功能成分,又由于癌起源于上皮组织,故上皮细胞培养特别受到重视。但上皮细胞培养中常混杂有成纤维细胞,培养时生长速度往往超过上皮细胞,并难以纯化,同时上皮细胞难以在体外长期生存,因此纯化和延长生存时间是培养关键。8 W( G+ ~: R' q: Y3 e A
体内上皮细胞生长在胶原构成的基膜,因此培养在有胶原的底物上可能利于生长,另外人或小鼠表皮细胞培养在以3T3细胞为饲养层(用射线照射后)时,细胞易生长并可发生一定程度的分化现象。降低PH、Ca2+含量和温度,向培养基中加入表皮生长因子,均有利于表皮细胞生长。7 ^& `/ K* k: W$ H1 c
以表皮细胞为例,用皮肤表皮和真皮分离培养法可获得纯上皮细胞,其法如下(黑木凳志夫 1981)) ~4 J" l: r# d j
1、取材:外科植皮或手术残余皮肤小块,早产流产儿皮肤更好,取角化层薄者,切成0.5-1平方厘米小块。
6 r, n; R4 O/ u# V 2、置0.02%EDTA中,室温,5分钟。
: j7 L9 _6 o0 e3 I 3、换入0.25%胰蛋白酶中,4℃过夜。
/ p( d F" e4 C/ U. @& D: S0 v1 H 4、分离:取出皮块,用血管钳或镊子将表皮与真皮层分开。8 l3 ~( E4 G& ?* d# V
5、取出表皮,剪成更小的块后,置0.25%胰酶中,37℃,30—60分钟。
# ?! U$ P/ P6 Q/ ] 6、反复吹打,制成悬液。
6 C4 s8 \1 Z2 i( y0 Z0 A* y% m 7、培养:用80目不锈钢纱网滤过后,低速离心,吸去上清。7 i3 @6 U% ^6 ^$ N
8、直接加入培养基(Eagle加20%小牛血清)制成细胞悬液,接种入培养瓶,CO2温箱培养。 |
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